Влияние некоторых экологических факторов на жизнеспособность репродуктивных клеток

Исключение составляет активность при температуре 200С через 10 минут, рН при температуре 200С через 10 минут, 20 минут и рН при температуре 390С через 10 минут. Это говорит о том, что в данных показателях не было выявлено статистически значимой зависимости между исходным и полученным значением признака. Иными словами, менее всего экологические факторы как то температура влияют на рН спермы.Аналогичный расчет был выполнен для показателей спермы в разные сезоны года. Результат представлен в таблице 8.Таблица 8Коэффициент СтюдентаЯнварьАпрельИюльОктябрьКритические значения коэффициента Стюдента для р≤ 0,05 – 2,03.Критические значения коэффициента Стюдента для р≤ 0,01 – 2,72.Объем эякулята, млЯнварьх2,3р≤ 0,051,7р>0,054,8р<0,05Апрельхх0,7р>0,056,7р<0,05Июльххх7,3р<0,05ОктябрьххххКонцентрация, млрд/млЯнварьх22,7р<0,0517,0р<0,050,4р>0,05Апрельхх35,3р<0,0520,8р<0,05Июльххх14,5р<0,05ОктябрьххххЧисло спермиев в эякуляте, млрд.Январьх32,0р<0,051,6р>0,051,6р>0,05Апрельхх22,4р<0,0514,3р>0,05Июльххх2,9р>0,05ОктябрьххххДоля аномальным спермиев, %Январьх2,4р≤ 0,057,2р>0,050,4р>0,05Апрельхх10,4р>0,052,6р≤ 0,05Июльххх2,6р≤ 0,05ОктябрьххххМожно видеть что часть показателей не продемонстрировали связь. Однако по большей части зависимость между показателями в различные сезоны можно считать доказанной.Подводя итоги, следует отметить, что даже в небольшой выборке можно видеть значимое воздействие на сперматозоиды температуры, токсикантов, комплекса погодных условий. Это говорит о необходимости учета данных показателей при разведении животных. ЗАКЛЮЧЕНИЕВ рамках проведенного исследования изучено влияние некоторых экологических факторов на жизнеспособность репродуктивных клеток. Данное исследование на фоне растущей численности населения, снижения качества экологической среды, ее безопасности, является исключительно актуальным. Год от года интенсивность негативного влияния различных экологических факторов на организм живых существ, в том числе сельскохозяйственных животных только растет и вероятность того, что в ближайшие годы произойдет снижение данного влияния в целом довольно мала, особенно если говорить о развивающихся странах. Как следствие, изучение характера и механизма влияния окружающей среды на организм живых существ в целом, изрепродуктивные клетки в частности, – это важная, перспективная работа, которая позволит также разработать подходы по защите указанных клеток, повышению их жизнеспособности.Результаты этой работы сегодня активно используются в сельском хозяйстве. В частности, разработано большое число методов защиты спермы от последствий криоконсервации, которая, как известно, часто применяется в программах разведения домашнего скота. Не менее широко разрабатываются и применяются методы защиты спермы от окислительного стресса.Иными словами, современные сведения в области влияния различных факторов окружающей среды на репродуктивные клетки имеют большое значение для развития сельского хозяйства. Мало того, полученные данные могут применяться как модельные и в современной медицине, т.к. в ряде случаев механизмы бесплодия имеют большое сходство у человека и животных. Изучая влияние различных негативных факторов на репродуктивны клетки животных человек может решить целый ряд проблем в репродуктивной сфере себе подобных. Если учесть, что бесплодие сегодня – это одна из больших и пока до конца не решенных проблем современной медицины, то возможности модельного изучения бесплодия и факторов его вызывающих являются важными для человеческой популяции.Полученные в результате исследования результаты позволяют сделать следующие выводы:Изучение проблемы влияния некоторых экологических факторов на жизнеспособность репродуктивных клеток прошло долгий путь от непонимания сути процессов размножения до многофакторных коллективных комплексных исследований в данной сфере. Большое число физических (температура, излучение) и химических факторов оказывают на репродуктивные клетки как негативное, так и позитивное влияние. В частности, выделяются такие негативные факторы как температура, свет, звук, давление, концентрация кислорода, химические вещества, инфекционные агенты и др. Вместе с тем, анализ литературы показывает, что существует большой список факторов, оказывающих положительное влияние, которое может применяться в современных технологиях ЭКО в животноводстве с целью повышения качества репродуктивных клеток.Показано, что дегидрогеназная активность растет с повышением температуры и ростом концентрации железного купороса. При этом рН смещается в сторону кислого. Комплекс климатических экологических факторовв разное время года может влиять на качество спермы. Наиболее оптимальным является апрель, самым негативным – июль.Таким образом, цель и задачи исследования достигнуты, гипотеза подтверждена.Полученные сведения могут быть применены для повышения качества репродуктивных клеток в различных хозяйствах, стать базой для более масштабного исследования.СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВАндреева М.Д., Арушанян Ж.А. Глобальное потепление // Актуальные направления научных исследований: перспективы развития. Сборник материалов международной научно-практической конференции, 2017. С. 337-338.Афанасьев Ю.И., Юрина Н.А., Котовский Е.Ф. Гистология: учебник / под ред. Ю.И. Афанасьева, Н.А. Юриной. 5-е изд., перераб. и доп. М.: Медицина, 2002. 744 с.Баранов В.С., Айламазян Э.К. Экологические и генетические причины нарушения репродуктивного здоровья и их профилактика // Журнал акушерства и женских болезней, 2007. Т. LVI. № 1. С. 3-10. Баранов В.С., Кузнецова Т.В. Цитогенетика эмбрионального развития человека. ООО «ИздательствоН-Л», 2007. 640 с.Голиченков В.А., Иванов Е.А., Никерясова Е.А. Эмбриология: учебник для студентов университетов. М.: Издательский центр «Академия», 2004. 224 с.Жимулев И.Ф. Общая и молекулярная генетика: учебное пособие для вузов / под ред. Е.С. Беляева, А.П. Акифьева. 4-е изд., стер. Новосибирск: Сиб. унив. изд-во, 2007. 479 с.Иващенко Т.Э., Баранов В.С. Биохимические и молекулярно-генетические аспекты патогенеза муковисцидоза. СПб.: Интермедика, 2020. 252 с.Краткий обзор. Положение дел в области продовольственной безопасности и питания в мире – 2020 // ФАО, МФСР, ЮНИСЕФ, ВПП и ВОЗ [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.fao.org/3/ca9699ru/CA9699RU.pdf (дата обращения: 13.11.2021).Маврищев В.В. Основы экологии: учебник. 3-е изд., испр. и доп. Минск: выш. шк., 2007. 447 с.Миркин Б.М., Наумова Л.Г. Краткий курс общей экологии. В 2 ч. Ч. 1. Экология видов и популяций: учебник. Уфа: Изд-во БГПУ, 2011. 206 с.Николайкин Н.И., Николайкина Н.Е., Мелезова О.П. Экология: учеб.для вузов. 3-е изд., стереотип. М.: Дрофа, 2004. 624 с.Ноздрачев А.Д. Академик Карл Максимович Бэр (к 220-летию со дня рождения) // BiologicalCommunications, 2013. № 2. С. 123-134.Эльдарова Х.Б. Глобальное потепление и его воздействие на среду обитания и организм человека // Современная медицина: актуальные вопросы, достижения и инновации. Сборник статей победителей международной научно-практической конференции МЦНС «Наука и Просвещение», 2016. С. 68-71.Ambruosi B, Uranio MF, Sardanelli AM, Pocar P, Martino NA, Paternoster MS, Amati F, Dell'Aquila ME. In vitro acute exposure to DEHP affects oocyte meiotic maturation, energy and oxidative stress parameters in a large animal model // PLoS One. 2011. Vol. 6(11). P. e27452. doi: 10.1371/journal.pone.0027452.Barbato V, Talevi R, Braun S, Merolla A, Sudhakaran S, Longobardi S, Gualtieri R. Supplementation of sperm media with zinc, D-aspartate and co-enzyme Q10 protects bull sperm against exogenous oxidative stress and improves their ability to support embryo development // Zygote. 2017. Vol. 25 (2). 168-175. doi: 10.1017/S0967199416000459.Bloom MS, Kim D, Vom Saal FS, Taylor JA, Cheng G, Lamb JD, Fujimoto VY. Bisphenol A exposure reduces the estradiol response to gonadotropin stimulation during in vitro fertilization // Fertil Steril. 2011. Vol. 96 (3). P. 672-677. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.06.063.Bozeman ML, Metz CW. Further Studies on Sensitivity of Chromosomes to Irradiation at Different Meiotic Stages in OOcytes of Sciara // Genetics. 1949. Vol. 34 (3). P. 285-314. doi: 10.1093/genetics/34.3.285.Brito LF, Silva AE, Rodrigues LH, Vieira FV, Deragon LA, Kastelic JP. Effects of environmental factors, age and genotype on sperm production and semen quality in Bos indicus and Bos taurus AI bulls in Brazil // Anim Reprod Sci. 2002. Vol. 70 (3-4). P. 181-190. doi: 10.1016/s0378-4320(02)00009-x.Campen KA, Kucharczyk KM, Bogin B, Ehrlich JM, Combelles CMH. Spindle abnormalities and chromosome misalignment in bovine oocytes after exposure to low doses of bisphenol A or bisphenol S // Hum Reprod. 2018. Vol. 33 (5). P. 895-904. doi: 10.1093/humrep/dey050Caserta D, Bordi G, Ciardo F, Marci R, La Rocca C, Tait S, Bergamasco B, Stecca L, Mantovani A, Guerranti C, Fanello EL, Perra G, Borghini F, Focardi SE, Moscarini M. The influence of endocrine disruptors in a selected population of infertile women // Gynecol Endocrinol. 2013. Vol. 29 (5). P. 444-447. doi: 10.3109/09513590.2012.758702.ChaithraShree AR, Ingole SD, Dighe VD, Nagvekar AS, Bharucha SV, Dagli NR, Kekan PM, Kharde SD. Effect of melatonin on bovine sperm characteristics and ultrastructure changes following cryopreservation // Vet Med Sci. 2020. Vol. 6(2). Р. 177-186. doi: 10.1002/vms3.224. Cofré E, Peralta OA, Raggi A, De Los Reyes M, Sales F, González-Bulnes A, Parraguez VH. Ram semen deterioration by short-term exposure to high altitude is prevented by improvement of antioxidant status // Animal. 2018. Vol. 12 (5). P. 1007-1014. doi: 10.1017 / S1751731117002452.Colaco S, Modi D. Genetics of the human Y chromosome and its association with male infertility // Reprod Biol Endocrinol. 2018. Vol. 16 (1). P. 14. doi: 10.1186/s12958-018-0330-5.Colaco S, Modi D. Genetics of the human Y chromosome and its association with male infertility // Reprod Biol Endocrinol. 2018. Vol. 16 (1). P. 14. doi: 10.1186/s12958-018-0330-5.Crespo S, Martínez M, Gadea J. Photo Stimulation of Seminal Doses with Red LED Light from Duroc Boars and Resultant Fertility in Iberian Sows // Animals (Basel). 2021. Vol. 11 (6). P. 1656. De Castro LS, de Assis PM, Siqueira AF, Hamilton TR, Mendes CM, Losano JD, Nichi M, Visintin JA, Assumpção ME. Sperm Oxidative Stress Is Detrimental to Embryo Development: A Dose-Dependent Study Model and a New and More Sensitive Oxidative Status Evaluation // Oxid Med Cell Longev. 2016. Vol. 2016. P. 8213071. doi: 10.1155/2016/8213071. Donoghue AM, Donoghue DJ. Effects of water- and lipid-soluble antioxidants on turkey sperm viability, membrane integrity, and motility during liquid storage // Poult Sci. 1997. Vol. 76 (10). P. 1440-1445. doi: 10.1093/ps/76.10.1440.Eberhardt BG, Satrapa RA, Capinzaiki CR, Trinca LA, Barros CM. Influence of the breed of bull (Bos taurus indicus vs. Bos taurus taurus) and the breed of cow (Bos taurus indicus, Bos taurus taurus and crossbred) on the resistance of bovine embryos to heat // Anim Reprod Sci. 2009. Vol. 114 (1-3). P. 54-61. doi: 10.1016/j.anireprosci.2008.09.008. Eckert T, Goericke-Pesch S, Heydel C, Bergmann M, Kauffold J, Failing K, Wehrend A. Interaction of different Chlamydiae species with bovine spermatozoa // BMC Microbiol. 2019. Vol. 19 (1). P. 23. doi: 10.1186/s12866-019-1392-zEhrlich S, Williams PL, Missmer SA, Flaws JA, Berry KF, Calafat AM, Ye X, Petrozza JC, Wright D, Hauser R. Urinary bisphenol A concentrations and implantation failure among women undergoing in vitro fertilization // Environ Health Perspect. 2012. Vol. 120 (7). P. 978-983. doi: 10.1289/ehp.1104307.Esteso MC, Fernández-Santos MR, Soler AJ, Montoro V, Quintero-Moreno A, Garde JJ. The effects of cryopreservation on the morphometric dimensions of Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) epididymal sperm heads // Reprod Domest Anim. Vol. 41 (3). P. 241-246. doi: 10.1111/j.1439-0531.2006.00676.x. Fernandes GH, de Carvalho Pde T, Serra AJ, Crespilho AM, Peron JP, Rossato C, Leal-Junior EC, Albertini R. The effect of low-level laser irradiation on sperm motility, and integrity of the plasma membrane and acrosome in cryopreserved bovine sperm // PLoS One. 2015. Vol. 10(3)/ P. e0121487. doi: 10.1371/journal.pone.0121487. Gravance CG, Vishwanath R, Pitt C, Garner DL, Casey PJ. Effects of cryopreservation on bull sperm head morphometry // J Androl. 1998. Vol. 19 (6). Р. 704-79.Haugan T, Reksen O, Gröhn YT, Kommisrud E, Ropstad E, Sehested E. Seasonal effects of semen collection and artificial insemination on dairy cow conception // Anim Reprod Sci. 2005. Vol, 90 (1-2). P. 57-71. doi: 10.1016/j.anireprosci.2005.02.002.Hu JH, Tian WQ, Zhao XL, Zan LS, Wang H, Li QW, Xin YP. The cryoprotective effects of ascorbic acid supplementation on bovine semen quality // Anim Reprod Sci. 2010. Vol. 121 (1-2), P. 72-77. doi: 10.1016/j.anireprosci.2010.04.180. Hu JH, Zan LS, Zhao XL, Li QW, Jiang ZL, Li YK, Li X. Effects of trehalose supplementation on semen quality and oxidative stress variables in frozen-thawed bovine semen // J Anim Sci. 2010. Vol. 88 (5). P/ 1657-1662. doi: 10.2527/jas.2009-2335.Iso-Touru T, Wurmser C, Venhoranta H, Hiltpold M, Savolainen T, Sironen A, Fischer K, Flisikowski K, Fries R, Vicente-Carrillo A, Alvarez-Rodriguez M, Nagy S, Mutikainen M, Peippo J, Taponen J, Sahana G, Guldbrandtsen B, Simonen H, Rodriguez-Martinez H, Andersson M, Pausch H. A splice donor variant in CCDC189 is associated with asthenospermia in Nordic Red dairy cattle // BMC Genomics. 2019. Vol. 20 (1). P. 286. doi: 10.1186/s12864-019-5628-y. JiaZZ, ZhangJW, ZhouD, XuDQ, FengXZ. Deltamethrin exposure induces oxidative stress and affects meiotic maturation in mouse oocyte // Chemosphere. 2019. Vol. 223. P. 704-713. doi: 10.1016/j.chemosphere.2019.02.092.Kanai Y, Hiramatsu R, Matoba S, Kidokoro T. From SRY to SOX9: mammalian testis differentiation // J Biochem. 2005. Vol. 138 (1). Р. 13-9. doi: 10.1093/jb/mvi098.Kodaira M, Asakawa JI, Nakamura N. Radiation-Induced Deletions in Mouse Spermatogonia are Usually Large (over 200 kb) and Contain Little Sequence Similarity at the Junctions // Radiat Res. 2017. Vol. 187 (6). P. 722-731. doi: 10.1667/RR14660.1.Lanciotti L, Cofini M, Leonardi A, Bertozzi M, Penta L, Esposito S. Different Clinical Presentations and Management in Complete Androgen Insensitivity Syndrome (CAIS) // Int J Environ Res Public Health. 2019. Vol. 16 (7). P. 1268. doi: 10.3390/ijerph16071268.Lançoni R, Celeghini ECC, Giuli V, de Carvalho CPT, Zoca GB, Garcia-Oliveros LN, Batissaco L, Oliveira LZ, de Arruda RP. Coenzyme Q-10 improves preservation of mitochondrial functionality and actin structure of cryopreserved stallion sperm // Anim Reprod. 2021. Vol. 18(1). P. e20200218. doi: 10.1590/1984-3143-AR2020-0218. LiCY, HaoHS, ZhaoYH, ZhangPP, WangHY, PangYW, DuWH, ZhaoSJ, LiuY, HuangJM, WangJJ, RuanWM, HaoT, ReiterRJ, ZhuHB, ZhaoXM. Melatonin Improves the Fertilization Capacity of Sex-Sorted Bull Sperm by Inhibiting Apoptosis and Increasing Fertilization Capacitation via MT1 // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20 (16). 3921. doi: 10.3390/ijms20163921. Li T, Liu Y, Yue S, Liao Z, Luo Z, Wang M, Cao C, Ding Y, Lin Z. Analyzing the Effects of Intrauterine Hypoxia on Gene Expression in Oocytes of Rat Offspring by Single Cell Transcriptome Sequencing // Front Genet. 2019. Vol. 10. P. 1102. doi: 10.3389/fgene.2019.01102.Llamas Luceño N, de Souza Ramos Angrimani D, de Cássia Bicudo L, Szymańska KJ, Van Poucke M, Demeyere K, Meyer E, Peelman L, Mullaart E, Broekhuijse MLWJ, Van Soom A. Exposing dairy bulls to high temperature-humidity index during spermatogenesis compromises subsequent embryo development in vitro // Theriogenology. 2020. Vol. 141. P. 16-25.  doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.08.034. Massányi M, Halo M Jr, Strapáková L, Slanina T, Ivanič P, Strapáková E, Strapák P, Halo M, Greń A, Formicki G, Massányi P. The Effect of Resorcinol on Bovine Spermatozoa Parameters in Vitro // Physiol Res. 2020. Vol. 69 (4). P. 675-686. doi: 10.33549/physiolres.934466.Mok-Lin E, Ehrlich S, Williams PL, Petrozza J, Wright DL, Calafat AM, Ye X, Hauser R. Urinary bisphenol A concentrations and ovarian response among women undergoing IVF // Int J Androl. 2010. Vol. 33 (2). P. 385-393. doi: 10.1111/j.1365-2605.2009.01014.x.Morrell JM. Heat stress and bull fertility // Theriogenology. 2020. Vol. 153. P. 62-67. doi: 10.1016/j.theriogenology. 2020.05.014. Öztürk C, Güngör Ş, Ataman MB, Bucak MN, Başpinar N, Ili P, Inanç ME. Effects of arginine and trehalose on post-thawed bovine sperm quality. Acta Vet Hung. 2017 Sep;65(3):429-439. doi: 10.1556/004.2017.040. Pausch H, Kölle S, Wurmser C, Schwarzenbacher H, Emmerling R, Jansen S, Trottmann M, Fuerst C, Götz KU, Fries R. A nonsense mutation in TMEM95 encoding a nondescript transmembrane protein causes idiopathic male subfertility in cattle // PLoS Genet. 2014. Vol. 10 (1). P. e1004044. doi: 10.1371/journal.pgen.1004044. Pausch H, Venhoranta H, Wurmser C, Hakala K, Iso-Touru T, Sironen A, Vingborg RK, Lohi H, Söderquist L, Fries R, Andersson M. A frameshift mutation in ARMC3 is associated with a tail stump sperm defect in Swedish Red (Bos taurus) cattle // BMC Genet. 2016. Vol. 17. Р. 49. doi: 10.1186/s12863-016-0356-7.Ribas-Maynou J, Yeste M, Salas-Huetos A. The Relationship between Sperm Oxidative Stress Alterations and IVF/ICSI Outcomes: A Systematic Review from Nonhuman Mammals // Biology (Basel). 2020. Vol. 9 (7). Р. 178. doi: 10.3390/biology9070178.Rispoli LA, Lawrence JL, Payton RR, Saxton AM, Schrock GE, Schrick FN, Middlebrooks BW, Dunlap JR, Parrish JJ, Edwards JL. Disparate consequences of heat stress exposure during meiotic maturation: embryo development after chemical activation vs fertilization of bovine oocytes // Reproduction. 2011. Vol. 142 (6). P. 831-843. doi: 10.1530/REP-11-0032. Roychoudhury S, Massanyi P, Bulla J, Choudhury MD, Straka L, Lukac N, Formicki G, Dankova M, Bardos L. In vitro copper toxicity on rabbit spermatozoa motility, morphology and cell membrane integrity // J Environ Sci Health A Tox Hazard Subst Environ Eng. 2010. Vol. 45 (12). P. 1482-1491. doi: 10.1080/10934529.2010.506092.Sabés-Alsina M, Johannisson A, Lundeheim N, Lopez-Bejar M, Morrell JM. Effects of season on bull sperm quality in thawed samples in northern Spain // Vet Rec. 2017. Vol. 180 (10). P. 251. doi: 10.1136/vr.103897. Satoh Y, Asakawa JI, Nishimura M, Kuo T, Shinkai N, Cullings HM, Minakuchi Y, Sese J, Toyoda A, Shimada Y, Nakamura N, Uchimura A. Characteristics of induced mutations in offspring derived from irradiated mouse spermatogonia and mature oocytes // Sci Rep. 2020. Vol. 10(1). P. 37. doi: 10.1038/s41598-019-56881-2. Satrapa RA, Nabhan T, Silva CF, Simões RA, Razza EM, Puelker RZ, Trinca LA, Barros CM. Influence of sire breed (Bos indicus versus Bos taurus) and interval from slaughter to oocyte aspiration on heat stress tolerance of in vitro-produced bovine embryos // Theriogenology. 2011. Vol. 76 (6). P. 1162-1167. doi: 10.1016/j.theriogenology.2011.05.026.Schautteet K, Vanrompay D. Chlamydiaceae infections in pig // Vet Res. 2011. Vol. 42 (1). Р. 29. doi: 10.1186/1297-9716-42-29. Seifi-Jamadi A, Zhandi M, Kohram H, Luceño NL, Leemans B, Henrotte E, Latour C, Demeyere K, Meyer E, Van Soom A. Influence of seasonal differences on semen quality and subsequent embryo development of Belgian Blue bulls // Theriogenology. 2020. Vol. 158. P. 8-17. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.08.037. Selvaraju S, Parthipan S, Somashekar L, Binsila BK, Kolte AP, Arangasamy A, Ravindra JP, Krawetz SA. Current status of sperm functional genomics and its diagnostic potential of fertility in bovine (Bos taurus) // Syst Biol Reprod Med. 2018. Vol. 64 (6)ю 484-501. doi: 10.1080/19396368.2018.1444816Shi F, Qiu J, Zhang J, Wang S, Zhao X, Feng X. The toxic effects and possible mechanisms of decabromodiphenyl ethane on mouse oocyte // Ecotoxicol Environ Saf. 2021. Vol. 207. P. 111290. doi: 10.1016/j.ecoenv.2020.111290.Shimamoto S, Nishimura Y, Nagamatsu G, Hamada N, Kita H, Hikabe O, Hamazaki N, Hayashi K. Hypoxia induces the dormant state in oocytes through expression of Foxo3 // Proc Natl Acad Sci U S A. 2019. Vol. 116 (25). P. 12321-12326. doi: 10.1073/pnas.1817223116.Silva CF, Sartorelli ES, Castilho AC, Satrapa RA, Puelker RZ, Razza EM, Ticianelli JS, Eduardo HP, Loureiro B, Barros CM. Effects of heat stress on development, quality and survival of Bos indicus and Bos taurus embryos produced in vitro // Theriogenology. 2013, Vol. 79 (2). P. 351-357. doi: 10.1016/j.theriogenology.2012.10.003. Sironen A, Thomsen B, Andersson M, Ahola V, Vilkki J. An intronic insertion in KPL2 results in aberrant splicing and causes the immotile short-tail sperm defect in the pig // Proc Natl Acad Sci U S A. 2006. Vol. 103 (13). Р. 5006-5011. doi: 10.1073/pnas.0506318103.Sironen A, Uimari P, Venhoranta H, Andersson M, Vilkki J. An exonic insertion within Tex14 gene causes spermatogenic arrest in pigs // BMC Genomics. 2011. Vol. 12. Р. 591. doi: 10.1186/1471-2164-12-591.Stamperna K, Giannoulis T, Nanas I, Kalemkeridou M, Dadouli K, Moutou K, Amiridis GS, Dovolou E. Short term temperature elevation during IVM affects embryo yield and alters gene expression pattern in oocytes, cumulus cells and blastocysts in cattle // Theriogenology. 2020. Vol. 156. P. 36-45. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.06.039Sudano MJ, Caixeta ES, Paschoal DM, Martins A Jr, Machado R, Buratini J, Landim-Alvarenga FD. Cryotolerance and global gene-expression patterns of Bos taurus indicus and Bos taurus taurus in vitro- and in vivo-produced blastocysts // Reprod Fertil Dev. 2014. Vol. 26 (8). P. 1129-1141. doi: 10.1071/RD13099.Torres M, Laguna-Barraza R, Dalmases M, Calle A, Pericuesta E, Montserrat JM, Navajas D, Gutierrez-Adan A, Farré R. Male fertility is reduced by chronic intermittent hypoxia mimicking sleep apnea in mice // Sleep. 2014. Vol. 37 (11). P. 1757-1765. doi: 10,5665 / сон 4166.Turhan A, Pereira MT, Schuler G, Bleul U, Kowalewski MP. Hypoxia-inducible factor (HIF1alpha) inhibition modulates cumulus cell function and affects bovine oocyte maturation in vitro† // Biol Reprod. 2021. Vol. 104 (2). P. 479-491. doi: 10.1093/biolre/ioaa196.Vargas A, Bustos-Obregón E, Hartley R. Effects of hypoxia on epididymal sperm parameters and protective role of ibuprofen and melatonin // Biol Res. 2011. Vol. 44 (2). P. 161-167. Villaverde AI, Fioratti EG, Penitenti M, Ikoma MR, Tsunemi MH, Papa FO, Lopes MD. Cryoprotective effect of different glycerol concentrations on domestic cat spermatozoa // Theriogenology. 2013. Vol. 80 (7). P. 730-737. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.06.010. Wang Q, Stringer JM, Liu J, Hutt KJ. Evaluation of mitochondria in oocytes following γ-irradiation // Sci Rep. 2019. Vol. 9 (1). P. 19941. doi: 10.1038/s41598-019-56423-w.Yeste M, Castillo-Martín M, Bonet S, Rodríguez-Gil JE. Impact of light irradiation on preservation and function of mammalian spermatozoa. Anim Reprod Sci. 2018. 194. 19-32.Yeste M, Codony F, Estrada E, Lleonart M, Balasch S, Peña A, Bonet S, Rodríguez-Gil JE. Specific LED-based red light photo-stimulation procedures improve overall sperm function and reproductive performance of boar ejaculates // Sci Rep. 2016. Vol. 6. P. 22569. doi: 10.1038/srep22569.Zhang H, Duan X, Yuan Z, Li W, Zhou G, Zhou Q, Bing L, Min F, Li X, Xie Y. Chromosomal aberrations induced by (12)C6+ ions and 60Co gamma-rays in mouse immature oocytes // Mutat Res. 2006. Vol. 595 (1-2). P. 37-41. doi: 10.1016/j.mrfmmm.2005.10.010.Zhang JW, Xu DQ, Feng XZ. The toxic effects and possible mechanisms of glyphosate on mouse oocytes // Chemosphere. 2019. Vol. 237. P. 124435. doi: 10.1016/j.chemosphere.2019.124435.