Вам нужна дипломная работа?
Интересует Биология?
Оставьте заявку
на Дипломную работу
Получите бесплатную
консультацию по
написанию
Сделайте заказ и
скачайте
результат на сайте
1
2
3

Исследование влияния антибиотиков на стафилококковые инфекции

  • 67 страниц
  • 24 источника
  • Добавлена 06.11.2011
2 750 руб. 5 500 руб.
  • Содержание
  • Часть работы
  • Список литературы
Содержание
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ ПО ПРОБЛЕМЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ВЛИЯНИЯ АНТИБИОТИКОВ НА СТАФИЛОКОККОВЫЕ ИНФЕКЦИИ
1.1. ИСТОРИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ И СОВРЕМЕННОЕ РАЗВИТИЕ АНТИБИОТИКОВ
1.2. СУЩНОСТЬ И ОСНОВНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ СТАФИЛОКОККОВЫХ ИНФЕКЦИЙ И ПУТИ ИХ БЛОКАДЫ
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ВЛИЯНИЯ АНТИБИОТИКОВ НА СТАФИЛОКОККОВЫЕ ИНФЕКЦИИ
2.1. ОРГАНИЗАЦИЯ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРНЫХ ИСТОЧНИКОВ

Фрагмент для ознакомления

Кроме того, в качестве плотных сред применяют свернутую сыворотку крови, свернутые яйца, картофель, среды с селикагелем. -
3. Состав. Среды делят на простые и сложные. К первым относят мясопептонный бульон (МПБ), мясопептонный агар (МПА), бульон и агар Хоттингера, питательный желатин и пептонную воду. Сложные среды готовят, прибавляя к простым средам кровь, сыворотку, углеводы и другие вещества, необходимые для размножения того или иного микроорганизма.
4. Назначение: а) основные (общеупотребительные) среды служат для культивирования большинства патогенных микробов. Это вышеупомянутые МПА, МПБ, бульон и агар Хоттингера, пептонная вода;
б) специальные среды служат для выделения и выращивания микроорганизмов, не растущих на простых средах. Например, для культивирования стрептококка к средам прибавляют сахар, для пневмо- и менингококков — сыворотку крови, для возбудителя коклюша — кровь;
в) элективные (избирательные) среды служат для выделения определенного вида микробов, росту которых они благоприятствуют, задерживая или подавляя рост сопутствующих микроорганизмов.
Посев, или культуральный метод в лабораторной диагностике считается «золотым стандартом.
Его смысл заключается в том, что на специальные питательные среды, пригодные для роста микроорганизмов, помещают забранный у пациента материал. Уже через сутки на питательном субстрате вырастает колония микробов. Через 7—10 дней, когда число микробов увеличивается, лаборант смотрит, какая инфекция «выросла». По виду, цвету, форме и консистенции этой колонии можно точно идентифицировать возбудителя.
Также в эту среду можно добавлять разные антибиотики – и смотреть, от какого антибиотика инфекция погибла, а от какого – нет. Таким образом проводится анализ на чувствительность к антибиотикам.
Для посева материал берут из мочеиспускательного канала, шейки матки, влагалища, глотки и прямой кишки.
Этот метод очень точен. Его точность достигает 95—100%. Если была выявлена чувствительность инфекции к антибиотику, то почти наверняка (при соблюдении назначений и режима врача), инфекция будет излечена. Вот почему микроорганизмов, выявленных кльтуральным методом, удается уничтожить даже после нескольких случаев безуспешного лечения заболевания.
Микробиологический контроль препаратов крови
Микробиологический контроль препаратов крови проводится в соответствии с приказом Минздрава РФ № 364 от 14 сентября 2001 г. «Об утверждении порядка медицинского обследования донора крови и ее компонентов». Донорами могут быть граждане в возрасте 18 – 60 лет, прошедшие медицинское обследование. Различают донорство крови, плазмы, в том числе иммунной, и донорство клеток крови.
Исследование проводилось в течение нескольких этапов.
1 этап. Перед взятием крови необходимо отломить у гемокультуральных флаконов пластиковые крышки, обработать поверхность внутренних пробок салфеткой, смоченной 70% этиловым спиртом в течение 1 минуты.
2 этап. Не допускается дезинфекция пробок с использованием раствора йода! Участок кожи над выбранным для пункции сосудом необходимо обработать тампоном или салфеткой, смоченной 70%-м этиловым спиртом. Затем другим тампоном или салфеткой, смоченным 1-2%-м раствором йода круговыми движениями, начиная от центра, в течение 30 секунд, подождать пока высохнет обработанный участок кожи.
3 этап. Не допускается пальпировать сосуд после обработки кожи и перед введением иглы! Для взятия крови используется та же методика, что и при взятии крови в вакуумные системы, единственно в холдер (переходник) вставляется не пробирка, а длинное горлышко гемокультурального флакона, в который кровь поступает под действием отрицательного давления. После венепункции и посева крови во флаконы для предотвращения возможного раздражения (ожога) с участка кожи и пациента стирают остатки йода с помощью тампона, смоченного 70%-м этиловым спиртом. Область прокола закрывают пластырем.
Время хранения биоматериала не превышает 24 часов при комнатной температуре!
4 этап. Методы микроскопических исследований включают приготовление мазков и препаратов для микроскопирования. Предварительная диагностика стафилококков может основываться на бактериоскопическом изучении препаратов – мазков, окрашенных по Грамму.
Патогенные стафилококки, помимо гроздевидного расположения, характеризуются правильной сферической формой клеток. Обнаружение стафилококков, находящихся внутри клеток, позволяет дать ответ о наличии стафилококковой инфекции. В большинстве же случаев для точного установления патогенности обнаруженных стафилококков требуется выделить эти микроорганизмы в чистой культуре путем посева исследуемого материала на плотные питательные среды.
Микроскопией материала можно определить некоторые морфологические признаки возбудителей (наличие ядер, жгутиков, внутриклеточных включений и т.д.), а также установить факт наличия или отсутствия микроорганизмов в присланных образцах.
Для первичного выделения стафилококков была использована обычная питательный агар (рН 7,2 7,4), приготовленный путем добавления 2% агар-агара к мясопептонному бульону . Стафилококки выросли через 18–24 ч инкубации при 37° С в виде гладких блестящих с ровными краями непрозрачных и слегка выпуклых колоний.
Характер пигмента выявляется лучше после дополнительного суточного выдерживания чашек при комнатной температуре (20° С) на свету. Употребление кровяного агара дает возможность, кроме выявления пигмента, определить и гемолитическую активность стафилококков. При этом необходимо помнить, что гемолитическая способность, определяемая на чашках с кровяным агаром, зависит от многих факторов – вида крови, ее концентрации, наличия в ней антитоксинов, толщины слоя среды, содержания углекислого газа в атмосфере культивирования, густоты посева, присутствия и характера сопутствующей флоры и т. д.
6 этап. Важным этапом бактериологического исследования является посев. В зависимости от цели исследования, характер посевного материала и среды используют разные методы посева. Все они включают обязательную цель: оградить посев от посторонних микробов. Поэтому работать следует быстро, но без резких движений, усиливающих колебания воздуха. Во время посевов нельзя разговаривать. Посевы лучше делать в боксе (при работе с заразным материалом! необходимо выполнять правила личной безопасности).
Этапы выделения чистой культуры:
1-й день – получение изолированных колоний. Каплю исследуемого материала петлей, пипеткой или стеклянной палочкой наносят на поверхность агара в чашке Петри. Шпателем втирают материал в поверхность среды; не прожигая и не перевертывая шпателя, производят посев на 2-й, а затем на 3-й чашке. При таком посеве на 1-ю чашку приходится много материала и соответственно много микробов, на 2-ю меньше и на 3-ю еще меньше.
Можно получить изолированные колонии при посеве петлей. Для этого исследуемый материал эмульгируют в бульоне или изотоническом растворе натрия хлорида.
2-й день — изучают рост микробов на чашках. В 1-й чашке обычно бывает сплошной рост — выделить изолированную колонию не удастся. На поверхности агара во 2-й и 3-й чашке вырастают изолированные колонии. Их изучают невооруженным глазом, с помощью лупы, при малом увеличении микроскопа и иногда в стереоскопическом микроскопе. Нужную колонию отмечают со стороны дна чашки и пересевают на скошенный агар. Посевы ставят в термостат. (Пересевать можно только изолированные колонии.)
3-й день — изучают характер роста на скошенном агаре. Делают мазок, окрашивают его и, убедившись в том, что культура чистая, приступают к ее изучению. На этом выделение чистой культуры заканчивается. Выделенная из определенного источника и изученная культура называется «штаммом».
При выделении чистой культуры из крови (гемокультуры) ее предварительно «подращивают» в жидкой среде: Ю—15 мл стерильно взятой крови засевают в 100—150 мл жидкой среды. Так поступают потому, что в крови обычно мало микробов. Соотношение засеваемой крови и питательной среды 1:10 не случайно — так достигается разведение крови (неразведенная кровь губительно действует на микроорганизмы). Колбы с посевом ставят в термостат. Через сутки (иногда через большее время, в зависимости от выделяемой культуры) из содержимого колб делают высевы на чашки для получения изолированных колоний. При необходимости повторяют высевы с интервалом в 2—3 дня.
При выделении чистой культуры из мочи их предварительно центрифугируют в асептических условиях и засевают осадок. Дальнейшее выделение чистой культуры производят обычным способом.
Для выделения чистой культуры широко применяют элективные среды. В ряде методов для получения чистых культур используют биологические особенности выделяемого микроба. Например, при выделении спорообразующих бактерий посевы 10 мин прогревают при 80°С, убивая этим вегетативные формы.
7 этап. Изучение выделенных культур
Изучение морфологии, подвижности, тинкториальных свойств, характера роста на средах (культуральные свойства), ферментативной активности и ряда других особенностей выделенного микроба позволяет установить его таксономическое положение, т. е. классифицировать микроорганизм: определить его род, вид, тип, подтип, разновидность. Это называется «идентификацией». Идентификация микроорганизмов очень важна при диагностике инфекций, установлении источников и путей ее передачи и в ряде других научно-практических исследований.
Результаты микробиологических исследований позволяют точно установить факт наличия возбудителя в исследуемом материале. Идентификацию чистых культур (до вида микроорганизма) проводят с учётом морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических, токситенных и антигенных свойств микроорганизма. Большинство исследований включает определение чувствительности к антимикробным препаратам у выделенного возбудителя. Для эпидемиологической оценки роли микроорганизма проводят внутривидовую идентификацию определением фаговаров, биоваров, резистентваров и т.д.
Биологические методы исследований направлены на определение наличия токсинов возбудителя в исследуемом материале и на обнаружение возбудителя (особенно при незначительном исходном содержании в исследуемом образце). Методы включают заражение лабораторных животных исследуемым материалом с последующим выделением чистой культуры патогена либо установлением факта присутствия микробного токсина и его природы.

2.3. Результаты исследования

Учет результатов
Визуализация каких-либо полос размером более 100 п.н. на дорожках «отрицательного контроля» свидетельствует о загрязнении реакционной смеси чужеродной ДНК (контаминации).
Результаты анализа в таких случаях должны быть обязательно отменены.
Визуализация одной отчетливой полосы соответствующего размера (см. таблицу ниже) на дорожках «положительного контроля» свидетельствует об успешном прохождении ПЦР. Результаты анализа в таких случаях могут быть успешно учтены.
Размер амплифицируемых фрагментов ДНК в положительных контролях, пар нуклеотидов
Примечаниям: Staphylococcus aureus 547 – 875 Размер амплифицируемых фрагментов варьирует в указанном диапазоне для разных штаммов
Staphylococcus epidermidis 124 штамм В1767 из коллекции ВКПМ
Streptococcus pneumoniae 682
Streptococcus pyogenes 220
В исследуемых образцах допустима визуализация дополнительных «минорных» полос выше или ниже референтной полосы «положительного контроля». Однако, визуализация в исследуемом образце двух и более полос одинаковой интенсивности свидетельствует либо о загрязнении образца чужеродной ДНК (возможно и смешанное происхождение образцов), либо о неспецифических условиях амплификации. В таких случаях результаты анализа должны быть отменены.
Стафилококковая инфекция
Род Staphylococcus насчитывает 32 вида, из которых коагулазоположительный S. aureus имеет наибольшее клиническое значение. Дифференциальная видовая диагностика методом ПЦР позволяет определять следующие виды: S. aureus, S. saprophyticus, S. capitis, S. haemolyticus, S. hominis, S. sciuri, S.
schleiferi, S. epidermidis, S. warneri.
Золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus)
Коагулаза продуцируется всеми штаммами S. aureus, и продукция этого белка является принципиальным клинико-микробиологическим критерием для идентификации S. aureus. Устойчивые к метициллину штаммы S. aureus (MRSA), в том числе эпидемические (Epidemic methicillin-resistant S. aureus, EMRSA), являются значимым болезнетворным агентом во всем мире. К настоящему времени описано более 16 штаммов EMRSA, причем в отдельных странах по распространенности преобладают различные штаммы. Так, в Великобритании по данным на 1996 г., доля штаммов EMRSA-3, 15 и 16 составила около 50% от всех фаготипированных изолятов S. aureus.
Во множестве исследований продемонстрирована успешная ПЦР-идентификация ДНК S. aureus из различных клинических образцов, и данный метод диагностики в настоящее время можно рекомендовать в качестве быстрого и эффективного теста для рутинного использования, наряду с такими методами как фаготипирование, плазмидный анализ, пульс-электрофорез.
В данном молекулярно-диагностическом наборе используется детекция коагулазо положительных штаммов S. aureus методом ПЦР, основанная на амплификации полиморфного участка (3-повторяющиеся элементы), находящегося в кодирующей части гена коагулазы (позиции 1513-2188).
Видоспецифичность метода проверена на 85 штаммах S. aureus, включая EMRSA-1…-16 и устойчивые к метициллину штаммы (methicillin-sensitive S. aureus, MSSA, 10 штаммов).
Видоспецифичность подтверждена негативными результатами при амплификации ДНК коагулазонегативных стафилококков: S. epidermidis, S. haemolyticus, S. saprophyticus.
При амплификации ДНК штамма EMRSA-16 выявляется фрагмент длиной 547 п.н. По причине вариабельности амплифицируемого фрагмента гена коагулазы, специфические продукты ПЦР для разных изолятов S. aureus находятся в дискретном диапазоне длин: 547±15, 603±20, 660 ±20, 875±10 п.н.
В ходе дополнительного анализа возможна частичная дифференциация штаммов MRSA и MSSA (в том числе выявление штаммов EMRSA-3, -15, -16) с использованием рестриктазного анализа продуктов ПЦР.
Эпидермальный стафилококк (Staphylococcus epidermidis)
S. epidermidis, аэробный грам-положительный коагулазоотрицательный стафилококк, является вторым по важности этиологическим агентом стафилококковых инфекций человека. В ряде исследований продемонстрирована успешная идентификация ДНК S. epidermidis из различных клинических образцов методом ПЦР, и этот метод диагностики в настоящее время можно рекомендовать в качестве быстрого и эффективного теста для рутинного использования.
В данном молекулярно-диагностическом наборе используется детекция S. epidermidis методом ПЦР, основанная на амплификации видоспецифического участка ДНК длиной 705 п.н.
Видоспецифичность метода проверена на 79 штаммах S. epidermidis, подтверждена отрицательными результатами при амплификации ДНК S. capitis.
Посев мочи – это исследование, чтобы обнаружить и идентифицировать микроорганизмы (обычно бактерии), которые вызывают инфекцию мочевых путей. Результаты посева мочи обычно готовы через 1 - 3 дня. Рост некоторых микроорганизмов занимает больше времени, поэтому для получения результатов посева может понадобиться больше времени.
Посев мочи Нормальный: В культуре нет роста бактерий или других микроорганизмов (такие как грибы). Результат посева мочи отрицателен. Неправильный: Организмы (обычно бактерии) растут в культуре. Результат посева мочи положителен. Количество бактерий от 100 000 или более в миллилитре (мл) мочи может быть причиной инфекции. Количество бактерий в пределах от 100 - 100 000 – это инфекция или загрязнение образца мочи (Вам, возможно, потребуется повторный посев мочи). Если количество 100 или меньше, инфекция маловероятна; однако, количество бактерий меньше 100 может выявляться, если Вы уже принимаете антибиотики.
Если результаты посева мочи положительны, то проводят тест на чувствительность бактерий к антибиотикам, чтобы подобрать наиболее адекватное лечение.
Ограничения анализа на посев мочи
Причины, по которым Вам не смогут назначить посев мочи, или результаты посева могут быть неверны, включают.
Прием антибиотиков.
Прием мочегонных препаратов или питье большого количества жидкости. Это разбавляет мочу и снижает количество бактерий в образце.
Прием большого количества витамина C.
Выводы
Посев мочи, сделанный на ранней стадии инфекции мочевых путей, может быть менее точным, чем тот, который сделан в разгар воспаления.
Посев мочи назначают при появлении признаков инфекции в общем анализе мочи (повышение количества лейкоцитов).
Посев мочи не всегда выполняется у женщин с симптомами инфекции мочевых путей и признаками воспаления в общем анализе мочи.
После окончания курса лечения инфекции мочевых путей посев мочи могут назначить повторно, чтобы подтвердить эффективность лечения.
Медработник может собрать образец мочи для посева при помощи мочевого катетера. Этот метод иногда используется, чтобы собрать мочу у человека, который очень болен или неспособен правильно собрать анализ мочи. Использование катетера, чтобы собрать образец мочи, снижает шанс попадания бактерий с кожи или половой области в образец мочи. Однако использование катетера повышает риск развития инфекции мочевых путей.
Люди, у которых мочевой катетер используется в течение длительного времени, относятся к группе высокого риска по развитию инфекций мочевых путей.
Сбор образца мочи у маленького ребенка или новорожденного может быть сделан при использовании специального полиэтиленового пакета с лентой вокруг его отверстия (сумка U). Сумку прикрепляют вокруг гениталий ребенка, пока он или она не помочится (обычно в течение часа). Потом сумку осторожно удаляют. Чтобы собрать образец мочи от очень больного ребенка, доктор может ввести иглу через живот ребенка непосредственно в мочевой пузырь.
Чтобы диагностировать туберкулезное поражение мочевых путей проводится специальный тест, для которого собирают всю первую утреннюю мочу в течение трех дней.
При помощи теста определения чувствительности к антибиотикам, врач может выбрать препарат, который лучше воздействует на определенные типы возбудителей инфекции мочевых путей.
Для того, чтобы получить результаты посева мочи некоторых типов бактерий или грибков может потребоваться от нескольких дней до нескольких недель.
Анализ результатов изучения наличие чувствительности стафилакока к антибиотикам в крови
Таблица 1
Таблица результатов изучения наличие чувствительности стафилакока к антибиотикам в крови
№ п/п ФИО Анализ крови 1 Александр Ж. Положительный к эритромицину и фуразолидону 2 Виктор К. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону, группе пенициллинового ряда 3 Аркадий К. Положительный к бацитрацину, лизостафину 4 Илья У. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону, группе пенициллинового ряда 5 Евгения П. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону 6 Анна У. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону. 7 Александра Ж. Отрицательный 8 Евгения К. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону, группе пенициллинового ряда 9 Мария И. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону, группе пенициллинового ряда 10 Полина В. Положительный к бацитрацину, лизостафину, эритромицину и фуразолидону
По результатам, представленным в таблице №1 можно сделать вывод, что у 90% больных был положительный анализ результатов Анализ результатов изучения наличие чувствительности стафилакока к антибиотикам в крови.
От сходных по морфологии бактерий стафилококки дифференцируют по каталазному и бензидиновому тестам, устойчивости к бацитрацину (0,04 ЕД, диск), лизостафину (200 мкг/мл), эритромицину (0,4 мкг/мл) и фуразолидону (100 мкг, диск), а также другим тестам.
Таблица 2
Таблица результатов изучения наличие чувствительности стафилакока к антибиотикам
№ п/п ФИО Анализ мочи 1 Александр Ж. Положительный 2 Виктор К. Положительный 3 Аркадий К. Положительный 4 Илья У. Положительный 5 Евгения П. Положительный 6 Анна У. Положительный 7 Александра Ж. Отрицательный 8 Евгения К. Положительный 9 Мария И. Положительный 10 Полина В. Положительный
По результатам, представленным в таблице №2 можно сделать вывод, что у 90% больных был положительный анализ результатов Анализ результатов изучения наличие чувствительности стафилококка к антибиотикам в крови.
Заключение
Актуальность исследования обусловлена современным состоянием инфекционных процессов. Под инфекционным процессом понимают совокупность патологических изменений в организме, возникающих под воздействием патогенных микроорганизмов в определенных условиях внешней среды и при наличии защитных реакций организма на это воздействие. Таким образом, инфекционный процесс включает взаимодействие трех основных факторов - возбудителя, макроорганизма и окружающей среды, каждый из которых может существенно влиять на его результат. Лечение и профилактику инфекционных болезней человека в современном мире невозможно представить без использования антибиотиков и других противомикробных химиотерапевтических средств.
Химиотерапевтические противомикробные средства – это химические препараты, которые применяют при инфекционных заболеваниях для лечения, направленного на микроб, как на причину болезни.
По результатам проведенного исследования влияния антибиотиков на стафилококковые инфекции были сделаны следующие выводы:
1) Стафилококки (от греч. staphyle - гроздь и кокки) - род шаровидных неподвижных бактерий, образующих при размножении скопления, похожие на грозди. Встречаются на коже животных и человека, в воздухе, воде, почве. Вызывают стафилококковую инфекцию у человека и стафилококкозы у животных.
2) Стафилококки - это целый класс микроорганизмов. На сегодня известно 27 видов из них только 3 способны вызывать заболевания: золотистый стафилококк, эпидермальный и сапрофитный. Более опасным считается золотистый стафилококк. Именно он обладает целым арсеналом разрушительных факторов. Он способен настойчиво и изобретательно отбиваться от антибиотиков и антисептиков, при этом никаких скидок на пол и возраст - и дети, и взрослые, и старики: все уязвимы и подвержены. Нет такого органа в организме человека, куда бы не мог попасть золотистый стафилококк и где бы он не смог спровоцировать воспалительный процесс.
3) Возникновение более ста человеческих болезней связаны напрямую с золотистым стафилококком. Микроб удивительно живуч во внешней среде: не утрачивает активности при высушивании, в продолжение 12 часов живет под воздействием прямых солнечных лучей, в продолжении 10 мин. выдерживает температуру 150 С, не погибает в чистом этиловом спирте, не страшится перекиси водорода. Практически 100% кожных гнойников - это золотистый стафилококк. Но это просто цветочки по сравнению с другими инфекционными болезнями, которые вызывает стафилококк. Бактерия вырабатывает фермент коагулазу. Когда с поверхности кожи стафилококк попадает в сосудистое русло, то под влиянием коагулазы начинается сворачивание крови и микробы оказываются внутри микротромбов - неуязвимо закрытые от защитных свойств иммунитета. С одной стороны, так может возникнуть стафилококковый сепсис (т.е. заражение крови), с другой стороны, стафилококк может проникнуть в любой орган и, соответственно, спровоцировать гнойниковый воспалительный процесс. Чаще всего возникает стафилококковая пневмония, поражение клапанов сердца. Гнойники могут находиться где угодно - и в печени, и в головном мозге, и в почках. Стафилококки производят сильнейшие яды (токсины), которые сами по себе могут вызвать крайне тяжелые заболевания.
4) Стафилококки внедряются в организм через кожные покровы и слизистые оболочки, распространяются воздушно-капельным и воздушно-пылевым путем. Септицемия (попадание в кровь) возникает в результате преодоления возбудителем лимфатических барьеров. В патогенезе заболеваний, вызываемых стафилококками, определенную роль играют как экзотоксин, так и бактериальные клетки.
5) Патогенные стафилококки у человека вызывают ряд поражений - гидрадениты, абсцессы, панариции, блефариты, фурункулы, карбункулы, периоститы, остеомиелиты, фолликулиты, сикозы, дерматиты, экземы, пневмонии, пиодермии, перитониты, менингиты, аппендициты, холециститы. Развитию гнойничковых поражений кожи и фурункулеза способствуют сахарный диабет, фенилкетонурия, авитаминозы, алиментарная дистрофия, потливость, мелкие травмы кожи профессионального характера, раздражение кожи химическими веществами. В ряде случаев стафилококки обусловливают вторичные заболевания при оспе, гриппе, раневых инфекциях, а также послеоперационные нагноения. Особенно грозными заболеваниями являются стафилококковый сепсис и стафилококковые пневмонии у детей. При употреблении пищевых продуктов (сыр, творог, молоко, торты, мороженное и др.), зараженных патогенными стафилококками, могут возникать интоксикации (общие отравления организма).
6) Стафилококки играют большую роль при смешанных инфекциях; их обнаруживают вместе со стрептококками при раневых инфекциях, дифтерии, туберкулезе, актиномикозе, ангинах, гриппе, парагриппозных и других острых респираторных заболеваниях. С широким использованием в практике антибактериальных препаратов и особенно антибиотиков произошли значительные изменения тяжести и степени распространенности стафилококковых поражений. Во всех странах мира отмечается рост частоты встречаемости заболеваний, вызываемых стафилококком, увеличение носительства среди медицинского персонала.
Стафилококковые инфекции отличаются многообразием возбудителя. Заражение довольно часто происходит не одним, а двумя и более разновидностями. Высокая концентрация лекарственных препаратов в организме людей и в биосфере привела к существенному нарушению микрофлоры, в частности к состоянию дисбактериозов.
Профилактика стафилококковых заболеваний у детей разработана недостаточно. В предупреждении распространения инфекции главную роль должен играть строгий контроль за санитарно-эпидемическим режимом лечебно-профилактических учреждений, контроль за беременными женщинами, родильницами, новорожденными: своевременное выявление у них малых форм гнойно-воспалительных заболеваний и немедленный перевод их при обнаружении патологии из физиологических отделений в палаты и даже отделения с инфекционным режимом. Большое значение имеет централизация стерилизационных подразделений в составе медицинских учреждений.
Для лечения стафилококков такого вида необходимо применение более высоких доз антибиотиков, увеличение длительности лечения или использование альтернативных антибактериальных средств, к которому данный вид стафилококка чувствителен. Стафилококки чувствительны к некоторым анилиновым красителям, особенно к бриллиантовому зеленому, который успешно применяют при лечении поверхностных гнойных поражений кожи, вызываемых стафилококками.
Важным мероприятием, направленным на снижение распространенности стафилококковой инфекции, является вакцинация очищенным адсорбированным стафилококковым анатоксином.
Список литературных источников
Билетова Н.В., Корнелаева Р.П., Кострикина Л.Г. и др. Санитарная микробиология. М.: Пищевая пром-сть, 1980. – 352 с.
Воробьев А.А. Медицинская и санитарная микробиология. М.: Академия, 2010. – 464 с.
Гигиенические требования к качеству и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов. Санитарные правила и нормы (САНПиН 2.3.2.560–96). – М., 1997.
Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. - 282 с.
Загаевский И.С. Жмурко Т.В. «Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии переработки продуктов животноводства». М.: Колос. 1983.
Инфекционные болезни и эпидемиология: учебник /В. И. Покровский, С. Г. Пак, Н. И., Брико, Б. К. Данилкин. - 2-е изд. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 816 с.
Кишкун А. А. Клиническая лабораторная диагностика: учеб. пособие для медицинских сестер. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 720 с.
Корнелаева Р.П., Степаненко П.П., Павлова Е.В. Санитарная микробиология сырья и продуктов животного происхождения. М.: 2006.–407 с.
Королева Н.С., Семенихина В.Ф. Санитарная микробиология молока и молочных продуктов. – М.: Пищевая промышленность, 1980. – 256 с.
Макаров В.А. и др. «Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства». М.: Агропромиздат. 1991.
Мухина С. А., Тарновская И. И. Теоретические основы сестринского дела: учебник для медицинских училищ и колледжей. - 2-е изд. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 368 с.
Осипова В. Л. Внутрибольничная инфекция: учебное пособие для медицинских училищ и колледжей. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 256 с.
Осипова В. Л. Дезинфекция: учеб. пособие для медицинских училищ и колледжей. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 136 с.
Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под редакцией А.А. Воробьева и др. М.: Академия, 2009. – 288 с.
Паразитарные болезни человека / Под ред. С. С. Сергиева, Ю. В. Лобзина. - СПб.: Фолиант, 2006. — 592 с.
Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. – 378 с.
Руководство для средних медицинских работников /Под ред. Ю. П. Никитина, В. М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 992 с.
Руководство по инфекционным болезням/ Под ред. Ю. В. Лобзина. — СПб.: Фолиант, 2003. - 1040 с.
Учайкин В. Ф., Нисевич Н. К, Шамшева О. В. Инфекционные болезни и вакцинопрофилактика у детей: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 688 с.
Сестринское дело при инфекционных болезнях с курсом ВИЧ-инфекции и эпидемиологии. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. – 416 с.
Степаненко П.П. Микробиология молока и молочных продуктов. М.: Лира, 2002. – 413 с.
Сидоров М.А., Р.П. Корнелаева «Микробиология мяса и мясопродуктов» 3-е издание. Москва «Колос» 1998–134 с.
Шувалова Е. П. Инфекционные болезни: учебник. - 6 изд. - М.: Медицина, 2005. - 696 с.
Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. М.: Лабинформ. - 1997 - 942 с.

Руководство по инфекционным болезням/ Под ред. Ю. В. Лобзина. СПб.: Фолиант, 2003. с. 32.
Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. с. 41.
Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под редакцией А.А. Воробьева и др. М.: Академия, 2009. с. 26.
Руководство по инфекционным болезням/ Под ред. Ю. В. Лобзина. СПб.: Фолиант, 2003. с. 35.
Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под редакцией А.А. Воробьева и др. М.: Академия, 2009. с. 28.
Руководство по инфекционным болезням/ Под ред. Ю. В. Лобзина. СПб.: Фолиант, 2003. с. 39.
Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. с. 45.
Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под редакцией А.А. Воробьева и др. М.: Академия, 2009. с. 31.
Шувалова Е. П. Инфекционные болезни: учебник. - 6 изд. - М.: Медицина, 2005. с. 108.
Шувалова Е. П. Инфекционные болезни: учебник. - 6 изд. - М.: Медицина, 2005. с. 109.
Там же, с. 110.
Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. с. 47.
Шувалова Е. П. Инфекционные болезни: учебник. - 6 изд. - М.: Медицина, 2005. с. 112.
Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. с. 49-51.
Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. с. 49.
Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. с. 51.
Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. с. 53.
Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. с. 56.
Степаненко П.П. Микробиология молока и молочных продуктов. М.: Лира, 2002. с. 81.
Руководство для средних медицинских работников /Под ред. Ю. П. Никитина, В. М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 232.
Руководство для средних медицинских работников /Под ред. Ю. П. Никитина, В. М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 233.
Руководство для средних медицинских работников /Под ред. Ю. П. Никитина, В. М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 235.
Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. М.: Лабинформ. – 1997. с. 131.
Медиа, 2007. с. 235.
Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. М.: Лабинформ. – 1997. с. 133.
Медиа, 2007. с. 235.
Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. М.: Лабинформ. – 1997. с. 137.
Учайкин В. Ф., Нисевич Н. К, Шамшева О. В. Инфекционные болезни и вакцинопрофилактика у детей: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 74.
Учайкин В. Ф., Нисевич Н. К, Шамшева О. В. Инфекционные болезни и вакцинопрофилактика у детей: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 76.
Учайкин В. Ф., Нисевич Н. К, Шамшева О. В. Инфекционные болезни и вакцинопрофилактика у детей: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. с. 81.
Сестринское дело при инфекционных болезнях с курсом ВИЧ-инфекции и эпидемиологии. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. с. 106.
Сестринское дело при инфекционных болезнях с курсом ВИЧ-инфекции и эпидемиологии. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. с. 108.












67

Список литературных источников
1.Билетова Н.В., Корнелаева Р.П., Кострикина Л.Г. и др. Санитарная микробиология. М.: Пищевая пром-сть, 1980. – 352 с.
2.Воробьев А.А. Медицинская и санитарная микробиология. М.: Академия, 2010. – 464 с.
3.Гигиенические требования к качеству и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов. Санитарные правила и нормы (САНПиН 2.3.2.560–96). – М., 1997.
4.Гавришева Н. А., Антонова Т. В. Инфекционный процесс: Клинические и патофизиологические аспекты: учеб. пособие. - СПб.: Эл-би, 2006. - 282 с.
5.Загаевский И.С. Жмурко Т.В. «Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии переработки продуктов животноводства». М.: Колос. 1983.
6.Инфекционные болезни и эпидемиология: учебник /В. И. Покровский, С. Г. Пак, Н. И., Брико, Б. К. Данилкин. - 2-е изд. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 816 с.
7.Кишкун А. А. Клиническая лабораторная диагностика: учеб. посо¬бие для медицинских сестер. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 720 с.
8.Корнелаева Р.П., Степаненко П.П., Павлова Е.В. Санитарная микробиология сырья и продуктов животного происхождения. М.: 2006.–407 с.
9.Королева Н.С., Семенихина В.Ф. Санитарная микробиология молока и молочных продуктов. – М.: Пищевая промышленность, 1980. – 256 с.
10.Макаров В.А. и др. «Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства». М.: Агропромиздат. 1991.
11.Мухина С. А., Тарновская И. И. Теоретические основы сестринского дела: учебник для медицинских училищ и колледжей. - 2-е изд. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. - 368 с.
12.Осипова В. Л. Внутрибольничная инфекция: учебное пособие для медицинских училищ и колледжей. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 256 с.
13.Осипова В. Л. Дезинфекция: учеб. пособие для медицинских училищ и колледжей. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 136 с.
14.Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Под редакцией А.А. Воробьева и др. М.: Академия, 2009. – 288 с.
15.Паразитарные болезни человека / Под ред. С. С. Сергиева, Ю. В. Лобзина. - СПб.: Фолиант, 2006. — 592 с.
16.Прозоркина Н.В. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д.: Феникс, 2010. – 378 с.
17.Руководство для средних медицинских работников /Под ред. Ю. П. Никитина, В. М. Чернышева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 992 с.
18.Руководство по инфекционным болезням/ Под ред. Ю. В. Лобзина. — СПб.: Фолиант, 2003. - 1040 с.
19.Учайкин В. Ф., Нисевич Н. К, Шамшева О. В. Инфекционные болезни и вакцинопрофилактика у детей: учебник. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 688 с.
20.Сестринское дело при инфекционных болезнях с курсом ВИЧ-инфекции и эпидемиологии. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. – 416 с.
21.Степаненко П.П. Микробиология молока и молочных продуктов. М.: Лира, 2002. – 413 с.
22.Сидоров М.А., Р.П. Корнелаева «Микробиология мяса и мясопродуктов» 3-е издание. Москва «Колос» 1998–134 с.
23.Шувалова Е. П. Инфекционные болезни: учебник. - 6 изд. - М.: Медицина, 2005. - 696 с.
24.Энциклопедия клинических лабораторных тестов под ред. Н.У. Тица. М.: Лабинформ. - 1997 - 942 с.

У нас вы можете заказать